正確儲存：SafeGreen 核酸染料對儲存條件有要求，需嚴格按照產品說明書存放，一般應避光、低溫（如 4℃）保存。若儲存不當，如暴露在強光下或高溫環境中，可能導致染料分解、變質，影響染色性能。定期檢查染料的儲存狀態，避免使用過期或出現沉淀、變色等異常的染料，確保染料質量穩定。

濃度確認與稀釋：使用前，確認染料的濃度標識，常見的是 10,000× 濃度的儲液。根據實驗需求，準確稀釋染料。例如，在膠染法中，每 50 mL 瓊脂糖溶液需加入 5 μL 10,000× 濃度的 SafeGreen 染料儲液，確保稀釋比例精確，避免因濃度過高或過低影響染色效果和實驗結果的準確性 。

膠染法：制備瓊脂糖凝膠時，待瓊脂糖溶液熔化并冷卻至 50 - 60℃，再加入染料，防止高溫破壞染料活性。加入染料后，充分攪拌混勻，避免局部濃度不均。倒入制膠模具時，動作平穩，防止產生氣泡影響凝膠質量。凝膠凝固后，放入電泳槽，加入適量電泳緩沖液，確保凝膠浸沒且液面高度合適，避免電泳過程中出現異常 。

泡染法：電泳結束后，小心取出凝膠，避免損壞。配制染色液時，將 10 μL 10,000× 濃度的 SafeGreen 染料加入到 100 ml 1×TAE 或 0.5×TBE 緩沖液中，確保染色液濃度準確。將凝膠浸沒在染色液中，室溫下輕輕振蕩孵育 30 - 60 分鐘，根據凝膠厚度、瓊脂糖濃度以及核酸片段大小適當調整染色時間，保證染色充分且不過度 。

樣品處理：處理核酸樣品時，避免樣品污染，使用無菌、無核酸酶的器具。將 DNA 樣品與上樣緩沖液混合時，確保混合均勻，防止因樣品分布不均導致電泳條帶異常。加樣時，用移液器小心操作，避免產生氣泡，且將樣品準確加入凝膠的加樣孔中，防止樣品溢出或加樣量不準確 。

電泳條件控制：根據核酸片段大小設置合適的電壓和電泳時間，一般電壓為 100 - 150V，時間為 30 - 60 分鐘，但需依據實際情況調整。電壓過高或時間過長，可能導致核酸條帶擴散、變形；電壓過低或時間過短，則可能使核酸分離不充分，影響結果判斷。在電泳過程中，保持電泳槽溫度穩定，避免因溫度變化影響核酸遷移率 。

成像系統校準：使用藍光切膠儀或紫外凝膠成像系統觀察凝膠前，確保儀器經過校準，保證激發光源強度、成像分辨率等參數準確。定期對儀器進行維護和校準，避免因儀器誤差導致核酸條帶的熒光強度、位置等數據不準確。

參數設置合理：在成像過程中，根據染料的特性和樣品情況，合理設置曝光時間、增益等參數。曝光時間過長可能導致條帶過亮、背景增高；曝光時間過短則可能使條帶信號弱，難以準確分析。通過預實驗確定最佳參數，確保獲得清晰、準確的核酸條帶圖像 。